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一种表达荧光素酶的高产酒克雷伯菌及其用途

2021-03-30 12:39:24

一种表达荧光素酶的高产酒克雷伯菌及其用途

　　技术领域

　　本发明涉及微生物医药领域，具体涉及一种含有荧光素酶基因的泛宿主质粒和稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌的构建方法，该方法构建获得的菌株，以及该菌株在计算细菌浓度的评估方法、筛选杀菌方法、筛选药物以及制备感染动物模型等方面的用途。

　　背景技术

　　研究表明，我国约60％的非酒精性脂肪肝的发病与患者肠道中高产酒性肺炎克雷伯菌(high-alcohol-producing Klebsiella pneumoniae，HiAlc Kpn)相关。从非酒精性脂肪肝患者肠道分离的HiAlc Kpn移植至小鼠体内，结果显示，HiAlc Kpn能诱导小鼠产生非酒精性脂肪肝。对上述肠道内定植HiAlc Kpn的小鼠饲喂葡萄糖能够在小鼠的血液中检测到酒精。因此HiAlc Kpn可以作为非酒精性脂肪肝的一个新的检测指标。

　　目前对HiAlc Kpn诱导非酒精性脂肪肝的发病机制等研究刚刚起步，因此亟需有力工具研究HiAlc Kpn感染途径、HiAlc Kpn在体内定位和扩散的特点、评估现行抗生素使用的疗效、适合的药物，例如抗生素或其他杀菌方法的效果。

　　生物发光是生物体内在酶的作用下发光的现象。生物发光现象广泛存在细菌、昆虫等生物体中。利用萤光素酶基因(luciferas gene cassette，LUX)基因标记细胞的生物发光技术具有操作简便、结果直观、不依赖底物、对机体损伤小等优点。该技术已广泛应用于肿瘤生长监测和转移示踪、基因治疗、目标基因表达的检测等多个领域。

　　我们构建了含有萤光素酶基因LUX A/B/C/D/E的泛宿主质粒pBBR1-LUX。该质粒能够在碳青霉烯耐药克雷伯菌和产酸克雷伯菌中稳定表达荧光素酶。该质粒能够在HiAlcKpn稳定存在，并产生氯霉素耐药，但是不能表达荧光素酶。因此，需要一种改进的方法，使得高产酒性肺炎克雷伯菌能够稳定表达荧光素酶。

　　发明内容

　　为了克服上述缺陷，我们改进了pBBR1-LUX，构建时在LUX A/B/C/D/E之前添加了组成型启动子。本发明构建包含组成型启动子和萤光素酶基因LUX A/B/C/D/E基因簇的质粒，并将通过电转化至高产酒克雷伯菌，经过传代，筛选可稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌，并将其用于计算细菌浓度的评估方法、筛选合适的杀菌方法、筛选药物以及制备感染动物模型等方面。因此，

　　本发明提供一种质粒，所述质粒包含组成型启动子和萤光素酶基因LUX A/B/C/D/E基因簇。

　　优选的，本发明构建了一个含有组成型启动子和LUX A/B/C/D/E的质粒。所述质粒为泛宿主质粒，该质粒可以在大肠杆菌中完成构建过程，其启动子能够被高产酒肺炎克雷伯菌识别。

　　本发明还提供一种基因改造的高产酒肺炎克雷伯菌，所述基因改造的高产酒克雷伯菌能稳定表达荧光素酶。优选的，所述基因改造的高产酒肺炎克雷伯菌能在组成型启动子的作用下稳定表达荧光素酶。

　　本发明还提供一种上述基因改造的高产酒克雷伯菌的构建方法，所述构建方法包括：

　　(1)制备包含LUX A/B/C/D/E基因簇的质粒；优选的，所述质粒为泛宿主质粒，更优选的，该质粒包含一个组成型启动子，该启动子能够被高产酒肺炎克雷伯菌识别，使得高产酒克雷伯菌能稳定表达荧光素酶，从而能检测到荧光。

　　(2)制备高产酒克雷伯菌的电转化感受态；

　　(3)将步骤(1)获得的质粒电转化步骤(2)中感受态高产酒克雷伯菌，挑选阳性菌落，获得基因改造的高产酒克雷伯菌。

　　优选的，上述组成型启动子为组成型强启动子，包括但不仅限于PJ23119、CaMV35S、P32等启动子。优选的，所述组成型强启动子为PJ23119。

　　优选的，所述步骤(1)包括：(a)LUX A/B/C/D/E扩增前，在引物设计时加上组成型启动子的序列，并将该引物扩增得到的LUX A/B/C/D/E基因簇克隆至泛宿主质粒pBBR1；(b)将质粒电转化至大肠杆菌感受态细胞；(c)筛选氯霉素阳性大肠杆菌；(d)从阳性大肠杆菌中提取包含组成型启动子和LUX A/B/C/D/E基因簇的泛宿主质粒。

　　优选的，所述组成型启动子的序列为：TTGACAGCTAGCTCAGTCCTAGGTATAATGCTAGC(SEQ ID NO.1)。

　　进一步，所述步骤(a)包括①、含有启动子序列的LUXA/B/C/D/E基因簇扩增；②、pBBR1MCS-1双酶切；③、将步骤②的酶切片段胶回收后与步骤①扩增的含有启动子序列的LUXA/B/C/D/E基因簇使用Gibson连接方法连接获得环状质粒。

　　更进一步，步骤①LUX A/B/C/D/E基因簇扩增时采用高保真酶，其退火温度低于推荐温度1-3℃，例如59-61℃。

　　本发明还提供一种上述基因改造的高产酒克雷伯菌在计算细菌浓度的评估方法中的应用。

　　本发明还提供一种上述基因改造的高产酒克雷伯菌在筛选杀菌方法中的应用。

　　本发明还提供一种上述基因改造的高产酒克雷伯菌在筛选药物中的应用。

　　本发明还提供一种上述基因改造的高产酒克雷伯菌在制备动物模型中的应用。

　　优选的，所述动物模型可以是细菌定位研究模型、抗生素杀菌效果验证模型、细菌定位与产酒效率分析以及对肝损伤的影响模型等。

　　本发明还提供一种计算细菌浓度的评估方法，所述评估方法包括(1)培养上述基因改造的高产酒克雷伯菌，(2)通过稀释方法，调整菌株的浓度，通过检测荧光值计算高产酒克雷伯菌的浓度，(3)绘制不同浓度基因改造的高产酒克雷伯菌的荧光值的标准曲线。

　　本发明还提供一种杀菌方法的评估方法，所述评估方法包括利用上述基因改造的高产酒克雷伯菌对杀菌方法进行评估。

　　优选的，所述杀菌方法包括利用紫外照射、酒精、NaOH或者84消毒液对携带高产酒克雷伯菌的物品进行杀菌，更优选的，所述杀菌方法包括紫外照射30min以上，或者以10％的84消毒液对物品进行消毒。

　　本发明还提供一种药物筛选方法，所述药物筛选方法包括利用上述基因改造的高产酒克雷伯菌对药物，例如抗生素进行筛选，以寻找对高产酒克雷伯菌的敏感、有效的抗生素。

　　所述评估方法可以是体内或者体外的评估方法。所述评估方法不是治疗方法。该评估方法用来评估候选杀菌方法，对候选杀菌方法的杀菌效果进行检测和比较，以确定哪些杀菌方法可以作为杀灭高产酒克雷伯菌，哪些不能，或者，比较不同杀菌方法的杀菌程度，即杀菌效果不是必然的，只是一种可能性。

　　所述药物筛选方法可以是体内或者体外的筛选方法。所述药物筛选方法不是治疗方法。该方法用来筛选药物，对候选药物的药效进行检测和比较，以确定哪些候选药物可以作为药物，哪些不能作为药物，或者，比较不同药物的药效敏感程度，即治疗效果不是必然的，只是一种可能性。

　　本发明还提供一种动物模型的制备方法，所述制备方法包括将上述基因改造的高产酒克雷伯菌注入动物体内。优选的，所述动物模型可以是造烧伤模型、手术模型、感染模型等。所述体内注入方式可以是鼻饲、灌胃、腹腔注射、尾静脉注射等。

　　优选的，所述菌株在动物体内富集浓度不低于105Cfu/mL。

　　本发明还提供一种高产酒克雷伯菌的杀菌方法，所述杀菌方法包括利用紫外照射、酒精、NaOH或者84消毒液对携带高产酒克雷伯菌的物品进行杀菌。

　　优选的，所述携带高产酒克雷伯菌的物品包括医疗器械，医疗材料等医疗物品，例如手术床，手术器械，医用床，医用床单等等，或者携带高产酒克雷伯菌的食品或土壤等等。

　　优选的，所述杀菌方法包括紫外照射30min以上，或者以10％的84消毒液对物品进行消毒。

　　本发明的良好技术效果包括：

　　1、本发明利用组成型启动子使得高产酒克雷伯菌能稳定表达荧光素酶。

　　2、本发明使用电转化方法制备感受态细胞，操作简便易得，而且转化效率高。优选的，LUX A/B/C/D/E基因簇扩增时采用高保真酶，其退火温度低于推荐温度1-3℃时，扩增效率最高。使用Gibson连接方法，提高连接效率。

　　3、首次利用电转化方法将泛宿主质粒将荧光素酶转化至高产酒克雷伯菌，从而获得生物发光的基因改造的高产酒克雷伯菌，方便的观察高产酒克雷伯菌的各种性能，包括生长，体内分布等各种性能；

　　4、利用本发明表达萤光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌可以便捷，快速、直观的筛选合适的药物，例如各种抗生素，为患者快速找到合适的抗生素或者其他治疗药物可以使患者早日康复。

　　5、利用本发明表达萤光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌筛选到适合的杀菌方法，如紫外线和84消毒液等，可以有效的对医疗物品进行杀菌，防止院内感染；

　　6、可视化观察不同的理化措施对于高产酒克雷伯菌的杀菌效果，对临床合理进行环境杀菌，为采取接触预防、患者隔离、环境清洁等更多干预措施提供依据，对于预防控制院内感染具有重要的意义；

　　7、可视化追踪高产酒克雷伯菌在实验动物体内的分布情况，对于优化抗菌药物使用方案，具有重要的指导意义。

　　以上只是概括了本发明的一些方面，不是也不应该认为是在任何方面限制本发明。本说明书提到的所有专利和出版物都是通过参考文献作为整体而引入本发明的。本领域的技术人员应认识到，对本发明可作某些改变并不偏离本发明的构思或范围。下面的实施例进一步详细说明本发明，不能认为是限制本发明或本发明所说明的具体方法的范围。

　　附图说明

　　图1：pBBR1-PJ-LUX A/B/C/D/E质粒构建策略图，其中A为pBBR1-LUX A/B/C/D/E质粒构建示意图，上：PCR线性扩增LUX A/B/C/D/E基因基团，下：KpnI/HindIII对pBBR1质粒进行双酶切。B为pBBR1-LUX A/B/C/D/E质粒转化到大肠杆菌示意图。

　　图2：不同传代菌株的荧光强度，P3-P10依次表示第三代——第十代。

　　图3：不同浓度稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒肺炎克雷伯菌的Luminescence荧光强度。

　　具体实施方式

　　下面通过制备例和实验例对本发明进行详细说明，以使本发明的特征和优点更清楚。但应该指出，制备和检测实验例用于理解本发明的构思，本发明的范围并不仅仅局限于本文中所列出的制备例和实验例。

　　下述制备例和实验例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

　　1、试验材料：

　　大肠杆菌(Escherichia coli，E.coli)DH5a感受态细胞、质粒小提试剂盒购于天根生化科技有限公司。胶回收试剂盒购于德国QIAGEN公司。高保真DNA聚合酶Q5、高保真DNA连接酶、KpnI、HindIII限制性内切酶均购于美国NEB公司。pBBR1MCS-LUX质粒来源于申请者构建。

　　2、检测仪器：

　　Veritas微孔板光度计(Turner BioSystems)、NanoDropTM One超微量紫外分光光度计(Thermo)、IVIS Lumina LT小动物活体成像仪(珀金埃尔默)。

　　3、高产酒克雷伯菌收集与准备

　　高产酒克雷伯菌为委托首都儿科研究所采集提供。高产酒克雷伯菌经全自动微生物分析仪(美国BD)进行细菌鉴定和药敏试验，鉴定为氯霉素敏感的高产酒克雷伯菌(药敏结果的判断参照美国临床实验室标准化研究所的推荐标准)。

　　4、统计学分析：

　　利用GraphPad Prism7.0软件进行统计分析，采用Kolmogorov-Simrnov对荧光值数据进行正态性检验。表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌荧光信号检测数据为偏态分布，荧光值用中位数表示，两组间采用Wilcoxon秩和检验。不同浓达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌光信号检测数据为偏态分布，荧光值用均值表示，采用OneWay anova检验。以P＜0.05为差异有统计学意义。

　　实施例1含有荧光素酶基因的泛宿主质粒的构建

　　1.LUXA/B/C/D/E基因簇扩增：

　　(1)、设计包含强启动子的LUX基因簇的引物对

　　LUX F：

　　agggaacaaaagctgggtacTTGACAGCTAGCTCAGTCCTAGGTATAATGCTAGCGCGGATAACAATTACTAGAG(SEQ ID NO.2，斜体带下划线序列为PJ23119启动子序列)；

　　LUX R：gctgcaggaattcgatatcaATTTGTCCTACTCAGGAGAG(SEQ ID NO.3)引物中的小写加粗序列为该序列与pBBR1的互补序列。

　　pBBR1-LUX质粒中lux A/B/C/D/E基因簇受T5启动子操纵，实验验证结果显示，T5启动子操纵下lux A/B/C/D/E基因簇不表达，因此我们插入了PJ23119启动子(PJ))。我们采用使用Q5高保真DNA聚合酶和含有LUX基因簇的引物对，引物设计过程中加入与pBBR1相同的序列(图1A所示)，扩增pBBR1-LUX质粒的LUXA/B/C/D/E基团。

　　(2)、LUX A/B/C/D/E基因簇PCR扩增

　　表1：LUX A/B/C/D/E基因簇扩增PCR反应体系

　　配置好上述反应体系后进行PCR反应，PCR程序设置如表2：

　　表2：PCR程序设置

　　程序进行至4℃时，取出反应产物，关闭PCR仪后进行后续PCR产物鉴定。

　　LUX A/B/C/D/E基因簇扩增时采用高保真酶，其退火温度(62℃)在推荐温度时可以有效的扩增LUX A/B/C/D/E基因簇，进一步，申请人经梯度PCR检测发现，其退火温度低于推荐温度1-3℃时(即59-61℃)，可进一步提高20％的扩增效率。本实施例使用60℃退火。

　　(3)、琼脂糖凝胶电泳：

　　1)配制适当浓度(1.5％)琼脂糖凝胶：称取1.5g琼脂糖(Gene Star)称重后溶至100ml TAE中，微波炉加热至琼脂糖完全溶解，溶液澄清透明。冷却40-50℃，加入10μl核酸染料(Gene star)。混匀后倾倒至组装好的胶槽内，室温静置30分钟。

　　2)组装电泳装置后上样：胶孔中加入DNA Ladder(Gene Star)及PCR产物(如有需要，加入0.66μl 10×loading buffer)各6μl，恒压120V电泳10分钟。紫外凝胶成像仪下观查PCR条带是否阳性，并将阳性条带位置与DNA Ladder比对，条带分子量与目标DNA(5000bp左右)一致，鉴定为阳性。

　　(4)、PCR产物测序并分析：

　　PCR产物凝胶回收：收集正确大小的DNA：用洁净刀片在紫外灯下切取目的DNA片段后称重，将切取的凝胶收集至1.5ml离心管。利用DNA凝胶回收与纯化试剂盒。按100μg凝胶加入300μl溶胶缓冲液，50℃震荡孵育，观察胶完全融化后加入异丙醇(每100μg凝胶加入100μl异丙醇)。将600μl上述液体转移至离心柱内，12000rpm离心1分钟，弃套管内废液，再将离心柱插入套管内，若液体有剩余，则将剩余液体加入同一离心柱内重复此步骤。离心柱内加500μl清洗液，12000rpm离心1分钟，弃套管内废液。小心取出离心柱，插入新的离心管，12000rpm离心1分钟后打开盖子，室温静置两分钟去除残留的异丙醇H2O。将离心柱置入一个新的1.5ml离心管内，并加入50μl无核酸酶水，室温放置2分钟后12000rpm离心1分钟，收集回收的DNA。将回收的DNA标记后送往测序公司(华大基因)进行一代测序。测序结果与pBAV1k-T5-LUX质粒进行对比分析，测序结果表明扩增的片段为LUX基因基团，进行后续实验。

　　2.pBBR1MCS-1双酶切：

　　pBBR1是大小为4707bp的革兰氏阴性菌泛宿主质粒，该质粒带有氯霉素耐药基因(Chloramphenicol resistance gene，cmR)、pBBR1复制起始位点(pBBR1ori)、pBBR1(pBBR1rep)调节因子。该质粒的3321/3281bp处具有HindIII和KpnI限制性内切酶的单一酶切位点，采用HindIII/KpnI酶切的方法获得线性化的PBBR1质粒。其示意图如图1.A所示。pBBR1MCS-1质粒HindIII/KpnI酶切体系如表3所示。

　　表3：pBBR1MCS-1质粒HindIII/KpnI酶切体系

　　3.将上述酶切片段胶回收后与扩增的LUXA/B/C/D/E基因簇使用Gibson连接方法连接：

　　将上述两个线性化片段经鉴定和凝胶回收后，使用2×NEBuilder HiFi DNAAssembly连接酶连接，连接成功的环状质粒产物命名为pBBR1-lux，示意图如图1.B。pBBR1MCS-1HindIII/KpnI酶切位点连接LUXA/B/C/D/E基因簇体系如表4：

　　表4：pBBR1MCS-1HindIII/KpnI酶切位点连接LUXA/B/C/D/E基因簇体系(20μl)

　　4.产物转化至大肠杆菌感受态细胞：

　　连接后产物电转化至大肠杆菌DH5a感受态细胞，阳性细菌筛选后，扩增细菌，提取质粒并进行一代测序鉴定，鉴定测序正确后的质粒命名为pBBR1-PJ-LUX。含有pBBR1-PJ-LUX的大肠杆菌收集并保存至-70℃冰箱。

　　实施例2含有荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌中荧光素基因表达和荧光稳定性检测。

　　1.高产酒克雷伯菌电转化感受态制备

　　挑取高产酒克雷伯菌单个菌落接种于液体BHI培养基，37℃静置培养过夜。取过夜培养的高产酒克雷伯菌菌液以1:10的比例接种于新鲜的BHI培养基中，37℃静置培养至OD600＝0.3～0.4。取出对数期菌液，冰浴30min后，4℃，4000rcf离心收集菌体，菌体分别用预冷的无菌双蒸水和预冷的1％蔗糖溶液洗涤两后，即为高产酒克雷伯菌感受态细胞。

　　2.pBBR1-LUX和pBBR1-PJ-LUX质粒电转化：

　　分别取5μl pBBR1-LUX和pBBR1-PJ-LUX质粒加入到100μl高产酒克雷伯菌感受态细胞中，混匀后冰浴10分钟。将上述混合物转移至预冷的0.1cm电击杯(美国伯乐)中，在电场强度：22.5kV/mm；电阻：200Ω；电容：25μF进行电转化。电击结束后，立即向电击杯中加入950μl，37℃预热的BHI培养基，于37℃静置培养1h后涂布于含25μg/ml氯霉素的哥伦比亚血平板培养基。37℃培养24h，挑取阳性菌落进行鉴定。

　　结果显示pBBR1-LUX转化的高产酒克雷伯菌具有氯霉素抗性但没有Luminesence信号。而pBBR1-PJ-LUX的氯霉素耐药的菌株中有Luminesence信号。

　　转化pBBR1-PJ-LUX的有Luminesence信号的阳性菌落经过三代培养后，使用Veritas微孔板光度计检测其Luminesence值，结果显示，经三代培养后的基因改造的高产酒克雷伯菌仍具有Luminesence信号，因此将该菌落命名为稳定表达荧光素酶基因的基因改造的高产酒克雷伯菌(HiAlc Kpn-pBBR1-PJ-LUX A/B/C/D/E)。

　　3.稳定表达荧光素酶基因的基因改造的高产酒克雷伯菌稳定性检测：

　　阳性菌落冻存于-70℃。7天后划平板复苏得到的单菌落为第三代菌株(P3)，将P3经1：100稀释后培养至对数期(OD600＝0.5-0.8)所得菌株为第四代菌株(P4)。依此类推得到P5、P6、P7、P8、P9、P10菌株。将上述菌株稀释至OD600＝1，检测其荧光强度，其结果如图2所示，本发明的菌落可以稳定传代，到第十代，其荧光值依然可以保持在10000/1OD左右。

　　实施例3：不同浓度稳定表达荧光素酶的基因改造的产酒克雷伯菌荧光素酶强度检测

　　挑取稳定表达荧光素酶的基因改造的产酒克雷伯菌单菌落菌株，37℃培养4小时后，使用NanoDropTM One超微量紫外分光光度计检测细菌OD值。通过稀释方法，调整菌株的浓度值OD600＝2。将所得OD600＝2的菌株按照1：2稀释9个梯度，在酶标仪上检测Luminesence值，结果如图3所示，其中系列1为：转化pBBR1-LUX质粒的不同浓度的高产酒肺炎克雷伯菌，系列2转pBBR1-PJ-LUX质粒的基因改造的高产酒肺炎克雷伯菌，荧光值为系列2的对数。数据显示：Luminesence值随菌落浓度降低而降低，其降低趋势符合对数方式降低形式。其拟合曲线为：y＝-1E+05ln(x)+235135R2＝0.96。同时，可以观察到Luminesence值随菌落浓度降低而降低，当菌株浓度为106Cfu和104Cfu时，其荧光强度分别为2353和65，低于105Cfu时，其荧光在小动物成像仪中不能被检测到，因此，建议该细菌用于动物实验时，所述菌株在动物体内富集浓度不能低于105Cfu/mL。

　　当菌株OD值为0.125-1之间(细菌处于对数生长期)时，Luminesence值随菌落浓度降低而降低，其降低趋势符合线性降低形式。其拟合曲线为：y＝-28009x+155158R2＝0.9558。

　　依据上述结果，以及小动物成像仪中检测到荧光的最低值，可以计算出制备动物感染模型时，接种细菌的最适浓度。

　　实施例4：不同处理方式对稳定表达荧光素酶的高产酒克雷伯菌杀菌效果的验证

　　采用了不同物理化学方法处理。物理方法：用接种环(1μl)对稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌进行三区划线，37℃敷箱中培养2h，紫外照射30min。化学方法：使用酒精(75％)、84消毒液(10％)、H2O2(30％)、NaOH(0.4％、4％)分别浸泡细菌接种环(1ul)30min，分别挑取1μl稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌进行三区划线。上述处理后的稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌平板37℃培养8h后，使用小动物成像仪观察稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌荧光。

　　结果显示，紫外照射30min以上，或者以10％的84消毒液对物品的灭菌效果最好。

　　实施例5：稳定表达荧光素酶的基因改造的高产酒克雷伯菌用于筛选抗生素

　　我们设计了不同抗生素杀菌方案。首先模拟感染环境的酸碱度、氧气含量，是否含有细胞因子等，可以模拟痰液、血液、尿液、粪便等环境。检测不同的抗生素浓度在特定的对于该菌的杀菌作用。优选不同抗生素使用浓度。

　　对于多重耐药菌，我们依据临床上的耐药菌治疗方案，优选特定条件下联合使用抗生素时不同的抗生素比例。

　　实施例6：HiAlc Kpn-pBBR1-PJ-LUX A/B/C/D/E用于制备感染动物模型

　　依据实施例3中推荐的建立动物感染模型的浓度，将基因改造的高产酒克雷伯菌稀释成相应的浓度。通过灌胃、鼻饲、尾静脉注射或者腹腔注射等方式感染模型动物。在小动物成像仪上观察细菌播散路径或定植位置。

　　以上详细描述了本发明的优选实施方式，但是，本发明并不限于上述实施方式中的具体细节，在本发明的技术构思范围内，可以对本发明的技术方案进行多种简单变型，这些简单变型均属于本发明的保护范围。

　　另外需要说明的是，在上述具体实施方式中所描述的各个具体技术特征，在不矛盾的情况下，可以通过任何合适的方式进行组合，为了避免不必要的重复，本发明对各种可能的组合方式不再另行说明。

　　此外，本发明的各种不同的实施方式之间也可以进行任意组合，只要其不违背本发明的思想，其同样应当视为本发明所公开的内容。

　　序列表

　　<110> 首都医科大学附属北京地坛医院

　　<120> 一种表达荧光素酶的高产酒克雷伯菌及其用途