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一种高效提取玛咖多糖的方法

2021-04-01 03:06:29

一种高效提取玛咖多糖的方法

  技术领域

  本发明属于植物有效成分提取技术领域,具体涉及一种高效提取玛咖多糖的方法。

  背景技术

  玛咖(学名:Lepidium meyenii Walp,又称maca)是原产于秘鲁安第斯山脉的一种十字花科植物,叶子椭圆,根茎形似小圆萝卜,可食用,是一种纯天然食品,营养成份丰富,有“南美人参”之誉。玛咖的下胚轴可能呈金色或者淡黄色、红色、紫色、蓝色、黑色或者绿色。我国于2003年引种成功,如今在我国云南和新疆等地已形成了一定规模的种植产业,卫生部于2011年批准玛咖作为新资源食品,相关的产品开发设计功能食品和化妆品等方面。已有文献报道,玛咖酰胺、芥子油苷和玛咖多糖有抗疲劳、抗肿瘤、调节免疫能力、调节内分泌等诸多功效。玛咖作为新资源食品已广泛收到国内外保健行业的关注。

  多糖是由糖苷键结合的糖链,至少由超过10个的单糖组成的聚合糖高分子碳水化合物。多糖作为生物大分子之一,目前的研究也越来越深入,有大量文献报道,许多天然多糖都拥有各种生物活性功能,如抗氧化活性、降血糖血脂功效、抑制癌细胞生长等。对多糖功能的研究和产品的开发也越来越多,已然成为了食品科学的前沿热点。

  发明内容

  本部分的目的在于提供一种高效提取玛咖多糖的方法。该方法以玛咖为原料,分离出纯度较高的三个多糖成分,该成分具有较好的抗氧化性和降血脂功效。

  为实现上述目的,本发明包括如下技术方案:

  一种高效提取玛咖多糖的方法,该方法包括如下步骤:

  I.将玛咖根茎粉碎过筛,采用超声波辅助热水浸提的方法提取玛咖粉中的水溶性物质;

  II.将步骤I获得的混合物过滤得到玛咖水提液,先后采用淀粉酶和糖化酶进行酶解,以去除淀粉,然后使酶灭活,离心取上清液;

  III.将乙醇加入步骤II获得的上清液中,低温放置,使多糖沉淀;

  IV.用水将步骤III获得的沉淀物用水复溶,复溶液采用Sevage法除蛋白,冻干后得到玛咖粗多糖。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤I的具体操作为:提取温度为40-60℃,提取时间为30-60min,超声功率为150-300W,料液比(重量/体积)为1∶20-40g/mL。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤II的具体操作为:在玛咖水提液中加入淀粉酶,淀粉酶与原料玛咖粉的质量比为1∶(100~2000),30~80℃下反应2~5h;再加入糖化酶,糖化酶与原料玛咖粉的质量比为1∶(50~1000),30~80℃下反应1~4h,之后90~100℃加热5~30min使酶灭活,离心取上清液。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤II的具体操作为:在玛咖水提液中加入淀粉酶,淀粉酶与原料玛咖粉的质量比为1∶1000;60℃下反应3h后再加入糖化酶,糖化酶与原料玛咖粉的质量比为1∶500,60℃下反应2h,之后100℃加热10min使酶灭活,离心取上清液。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤II的淀粉酶为α淀粉酶。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤III中,多糖溶液和乙醇的体积比为1∶(2~4),在4~10℃放置10~14h,使多糖沉淀分离。

  如上所述的方法,优选地,所述步骤IV的具体操作为:配置Sevage试剂,其中正丁醇与氯仿的体积比为1∶(2~5);将Sevage试剂和多糖溶液按体积分数1∶(1~4)混合震荡,离心分层,保留上层溶液,之后再次加入Sevage试剂反复操作,直至上层溶液中没有蛋白检出。

  如上所述的方法,优选地,所述方法还包括:

  步骤V:将所述步骤IV获得的玛咖粗多糖用阴离子交换柱分离,获得三个多糖成分,分别为MPS1、MPS2和MPS3。

  如上所述的方法,优选地,所述阴离子交换柱分离条件为:

  离子交换柱采用的填料为聚甲基丙烯酸树脂,采用的溶剂依次为ddH2O、0.1MNaCl和0.2M NaCl;ddH2O洗脱得到MPS1,0.1M NaCl洗脱得到MPS2,0.2M NaCl洗脱得到MPS3。

  如上所述的方法,优选地,所述MPS1的单糖组成及质量比为阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖∶甘露糖=1.9∶1.4∶3.8∶1;MPS2的单糖组成及质量比为阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖=1.8∶1.3∶1;MPS3的单糖组成及质量比为鼠李糖∶阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖=1∶15.6∶24.3∶5.3。

  本发明的有益效果在于:该方法以玛咖为原料分离出的多糖主要为三个多糖成分,该方法操作简单、提取温度低时间短、提取率高、纯度较高,获得的三个多糖成分具有较好的抗氧化性和降血脂功效。

  附图说明

  图1为采用阴离子交换柱用氯化钠水溶液梯度洗脱粗多糖的过程图。

  图2为三种多糖成分吸光度值检测结果。

  图3为DPPH自由基清除实验结果。

  图4为羟基自由基清除实验结果。

  图5为三种玛咖多糖的红外图谱。

  图6a为MPS1的单糖组成;

  图6b为MPS2的单糖组成;

  图6c为MPS3的单糖组成。

  具体实施方式

  为使本发明的上述目的、特征和优点能够更加明显易懂,下面结合说明书实施例对本发明的具体实施方式做详细的说明。

  在下面的描述中阐述了很多具体细节以便于充分理解本发明,但是本发明还可以采用其他不同于在此描述的其它方式来实施,本领域技术人员可以在不违背本发明内涵的情况下做类似推广,因此本发明不受下面公开的具体实施例的限制。

  实施例1提取玛咖多糖(一)

  1.提取过程

  准确称取1g玛咖根粉末,按料液比为1∶32(g/mL)加入水中,提取时间42min,超声功率220W,提取温度50℃,提取结束之后过滤,加入α淀粉酶(诺维信公司),淀粉酶与原料玛咖粉的质量比为1∶1000,在60℃反应3h后再加入糖化酶(诺维信公司),糖化酶与原料玛咖粉的质量比为1∶500,60℃下反应2h,之后100℃加热10min使酶灭活,离心取上清液。将上清与乙醇混合,使乙醇终浓度达到75%,在4℃下静置12h,使多糖沉淀;用水将沉淀物复溶,按正丁醇与氯仿的体积比为1∶4配置Sevage试剂,将Sevage试剂与多糖溶液混合震荡,试剂与多糖溶液体积比为1∶2,保留上层溶液,使用Sevage试剂反复多次萃取蛋白,直至上层溶液不再检测出蛋白,将去除蛋白的上层溶液冷冻干燥,获得玛咖粗多糖,玛咖多粗糖的总提取率为11.0wt%。

  2.产品分离

  采用阴离子交换柱(DEAE-650M,TOSOH),氯化钠水溶液梯度洗脱,分离粗多糖过程如图1所示,每管洗脱液8ml,水洗脱获得MPS1、0.1MNaCl洗脱获得MPS2、0.2MNaCl洗脱获得MPS3,三种成分重量百分比分别为57.7%、18.3%、24.0%,其中MPS1所占比例最多,为中性多糖。

  3.产品分析

  (1)产品纯度

  分别对三种多糖成分进行吸光度值检测,结果如图2所示,可以看出三种多糖成分在波长280nm处没有明显的吸收峰,可以判断多糖中没有蛋白质的杂质。

  (2)定性检测

  用离子色谱对三种多糖成分进行检测,结果如图6所示。图6a为MPS1的单糖组成,测得MPS1的单糖组成比例为阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖∶甘露糖=1.9∶1.4∶3.8∶1。图6b为MPS2的单糖组成,MPS2的单糖组成比例为阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖=1.8∶1.3∶1。图6c为MPS3的单糖组成,MPS3的单糖组成比例为鼠李糖∶阿拉伯糖∶半乳糖∶葡萄糖=1∶15.6∶24.3∶5.3。

  (3)红外光谱检测

  如图5所示,从上到下3条线分别表示MPS1、MPS2和MPS3的红外图谱,有大部分峰是相同的,其中,在3360cm-1左右出现的峰是-OH基团,2930cm-1出现的峰表示的是C-H链接,1600cm-1的峰表示有C=O链接键,1400cm-1表示C=C链接键,MPS1在1053cm-1的峰为吡喃环,MPS2在559cm-1左右出现的吸收峰表示了MPS2有α螺旋结构。

  实施例2提取玛咖多糖(二)

  1.准确称取1g玛咖根粉末,按料液比为1∶30(g/mL)加入水中,提取温度40℃,超声功率300W,提取时间45min,提取结束之后过滤,加入α淀粉酶(诺维信公司),淀粉酶与原料玛咖粉的质量比为1∶500,在50℃反应5h后再加入糖化酶(诺维信公司),糖化酶与原料玛咖粉的质量比为1∶1000,50℃下反应3h,之后100℃加热20min使酶灭活,离心取上清液。将上清与乙醇混合,使乙醇终浓度达到80%,在5℃下静置14h,使多糖沉淀;用水将沉淀物复溶,按正丁醇与氯仿的体积比为1∶5配置Sevage试剂,将Sevage试剂与多糖溶液混合震荡,试剂与多糖溶液体积比为1∶4,保留上层溶液,使用Sevage试剂反复多次萃取蛋白,直至上层溶液不再检测出蛋白,将去除蛋白的上层溶液冷冻干燥,最终玛咖多糖的提取率为10.5%。

  2.产品分离

  采用与实施例1相同的阴离子交换柱和分离条件进行玛咖粗多糖的分离,三种成分重量百分比分别为51.9%、20.0%、28.1%。

  3.产品分析

  三种成分的纯度和定性检测检测结果与实施例1相似。

  实施例3提取玛咖多糖(三)

  准确称取1g玛咖根粉末,按料液比1∶30(g/mL)加入水中,提取温度50℃,超声功率200W,提取时间45min,提取结束之后过滤,加入α淀粉酶(诺维信公司),淀粉酶与原料玛咖粉的质量比为1∶800,在70℃反应2h后再加入糖化酶(诺维信公司),糖化酶与原料玛咖粉的质量比为1∶800,70℃下反应3h,之后100℃加热30min使酶灭活,离心取上清液。将上清与乙醇混合,使乙醇终浓度达到70%,在5℃下静置13h,使多糖沉淀;用水将沉淀物复溶,按正丁醇与氯仿的体积比为1∶3配置Sevage试剂,将Sevage试剂与多糖溶液混合震荡,试剂与多糖溶液体积比为1∶3,保留上层溶液,使用Sevage试剂反复多次萃取蛋白,直至上层溶液不再检测出蛋白,将去除蛋白的上层溶液冷冻干燥,最终玛咖多糖的提取率为10%。

  2.产品分离

  采用与实施例1相同的阴离子交换柱和分离条件进行玛咖粗多糖的分离,三种成分重量百分比分别为52.2%、19.7%、28.1%。

  3.产品分析

  三种成分的纯度和定性检测检测结果与实施例1相似。

  实验例1玛咖多糖的抗氧化性实验

  本实验主要涉及对两种自由基清除的实验,分别是DPPH自由基和羟基自由基。

  一、DPPH自由基清除实验:

  取0.5mL不同浓度(1、2、4、6、8、10mg/mL)的多糖样品与0.5mL DPPH(0.04mg/mL,溶于无水甲醇)混合,充分振荡并室温静置40min,在517nm处测定吸光值。

  DPPH清除率=(1-(A3-A2)/A1)×100%

  式中A1表示用无水甲醇代替样品,A2表示用无水甲醇代替DPPH溶液,A3表示DPPH溶液和样品混合反应。

  玛咖多糖组成之一MPS1对DPPH自由基清除效果最佳,在5mg/mL的浓度下清除率达到了81.8%,如图3所示。

  二、羟基自由基清除实验:

  取0.5ml邻二氮菲溶液与1ml PBS(pH 7.4)混匀,加入0.5ml待测样品(1、2、4、6、8、10mg/mL)和0.5ml硫酸亚铁,混匀后加0.5ml过氧化氢,最后ddH2O定容至10ml,在37℃水浴1h后再536nm处测定吸光值。

  羟自由基去除率=[(A3-A1)/(A2-A1)]×100%

  式中A1表示不添加样品;A2表示不添加过氧化氢;A3表示添加样品。

  玛咖多糖组成之一MPS2对羟基自由基清除效果最佳,在8mg/mL的浓度下清除率达到了100%,如图4所示。

  从图3、图4可以看出MPS1对DPPH自由基和羟基自由基的清除效果较佳,分别能达到81.8%(5mg/mL)和89.5%(10mg/mL),而MPS2对羟基自由基的清除效果略高于MPS1,在8mg/mL的浓度下清除率达到了100%。

  实验例2玛咖多糖的降血脂作用

  取2mL不同浓度的多糖,放入试管中,加0.5mL 0.01M的HCl,37℃恒温振荡1h。以0.1mol/L NaOH调节pH至6.3,加入2ml 10mg/ml的胰蛋白酶,37℃振荡1h。每个样品加入2mL0.4mmol/L甘氨胆酸钠或0.5mmol/L牛磺胆酸钠,37℃振荡1h。4000r/min离心20min,取上清,加6ml70%的硫酸70℃反应20min,取出冰浴5min,在387nm处测定吸光值。

  玛咖多糖的三种组成MPS1、MPS2、MPS3的对牛磺胆酸钠和甘氨胆酸钠的结合能力如表1所示。

  表1玛咖多糖三种组分对牛磺胆酸钠和甘氨胆酸钠的结合能力

  

  从表1可以看出,三种多糖对牛磺胆酸钠的结合能力明显高于甘氨胆酸钠,其中MPS3的结合能力最佳,达到了2.4590±0.5771(μmol/100mg),通过结合胆酸钠可以减少胆汁酸的肝肠循环,促进肝脏降解更多的胆汁酸,使得血液中的胆固醇流入肝脏,起到了降低血脂的作用。

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